常量氧浓度控制系统通过控制氧气与氮气的输出流量，维持暴露箱内设置数值0% ~ 100%的氧气浓度，可精确控制和平稳调节小动物饲养箱内氧浓度的变化，维持稳定的氧浓度环境。可用于大鼠小鼠等实验动物的缺氧或富氧等各种实验。有S1005、S1006和S1001（经济型）多种款式可选。

S1005/S1006常量氧浓度控制系统产品由主机和暴露箱两部分组成。主机可搭配不同尺寸的暴露箱使用，通过控制氧气的流速和通气的开关来调节输入到暴露箱体内的氧气浓度，通过触摸屏，您可以自由设置需要的参数，包括流速、时间、氧浓度、二氧化碳浓度等。

暴露箱可根据实验动物大小数量定制大小规格。高精度的二氧化碳浓度电化学传感器，响应快，精度高。标配温度、湿度检测模块，标配湿度控制器，能够控制湿度范围：20-99%RH。内置散热风扇维持内部舒适环境，箱体采用透明亚克力材质可随时观察箱体内动物的状态与活动。配备铝合金散热板，加快箱内外温度的传导，有效降低箱体内的温度。

型号：S1005（适用于低氧环境）；S1006（适用于高氧环境）

S1001常量氧浓度控制器（经济型）
经济型常量氧浓度控制器由氧浓度传感器、暴露箱、单/双通道流量控制器组成。氧浓度传感器采用CITY固态氧浓度传感器，测量准确精度高。单通道通过连接氧气或者氮气钢瓶充入对应气体升高或降低氧浓度， 双通道可同时连接氧气和氮气钢瓶，拥有更快的调节速度和精确度。氮气氧气气体流量控制范围：0-12L/min，5L/min。

 暴露箱可根据实验动物大小数量定制大小规格。高精度的二氧化碳浓度电化学传感器，响应快，精度高。标配温度、湿度检测模块，标配湿度控制器，能够控制湿度范围：20-99%RH。内置散热风扇维持内部舒适环境，箱体采用透明亚克力材质可随时观察箱体内动物的状态与活动。配备铝合金散热板，加快箱内外温度的传导，有效降低箱体内的温度。

型号：S1007型

优势特点：

氧浓度控制主机

• 模块化设计：主机和暴露箱分离，搭配灵活，使用方便。

• 指尖交互触摸屏：在触摸屏上设置各种参数，上手简单。

• 流速快速调节：自动反馈调节氧气流速，氧浓度上升曲线平滑流畅。

• 多参数可设置：充气时间、充气间隔、充气流量可调可控。

• 曲线实时显示：实时显示氧气浓度、二氧化碳、温度、湿度的变化曲线。

• 氧浓度范围大：0% ~ 100%可调可测量，可轻松调节任意所需要的氧气浓度，传感器置于暴露箱体内，可实时显示舱体氧浓度，测量误差小于 0.1%；理论寿命5年以上。

• 实时报警功能：多种报警参数可调，当气体浓度偏离预设值或者传感器信号脱落，仪器会自动报警，提醒实验人员进行检查。

暴露箱

• 均一稳定：稳定暴露箱配备两个回流风扇，保障箱体内各暴露位置的氧气浓度均匀一致。

• 定制服务：定制暴露箱尺寸，数控型加热器或制冷器，来改变箱体内的温度，温度控制范围：室温±5°C。

• 独特材质：箱体采用透明加强型亚克力材质，厚度不小于12mm。

• 散热优化：配备铝合金散热板，加快箱内外温度的传导，有效降低箱体内的温度。

应用领域：

• 细胞培养:常量氧浓度控制系统能精准调控细胞培养过程中的氧浓度环境。

• 组织工程:在三维生物材料支架上培养人工组织时,需要精细控制氧浓度,以满足不同组织细胞的氧需求

• 生理生化实验:许多生理生化过程对氧浓度变化很敏感,如氧化应激反应、代谢过程等。

• 动物试验:在动物模型实验中,模拟特定的氧浓度环境非常重要,如缺氧、高氧等条件下的生理病理变化。

• 仪器设备检测:许多生物医学测量仪器对氧浓度环境要求较高,需要在恒定氧气条件下进行标定和校准。

型号规格：

注：S1005、S1006与S1001兼容同款暴露箱

参考文献：

1．Huang, Xiuji et al. “Intermittent hypoxia-induced METTL3 downregulation facilitates MGLL-mediated lipolysis of adipocytes in OSAS.” Cell death discovery vol. 8,1 352. 6 Aug. 2022, doi:10.1038/s41420-022-01149-4

2.Cao, Jing, et al. "Effect and mechanism of vascular endothelial growth factor-A on pulmonary vascular remodeling in neonatal rats with hypoxic pulmonary hypertension." Zhongguo Dang dai er ke za zhi= Chinese Journal of Contemporary Pediatrics 23.1 (2021): 103-110. doi:10.7499/j.issn.1008-8830.2009005

3.Ma, Lijuan et al. “Intermittent hypoxia induces tumor immune escape in murine S180 solid tumors via the upregulation of TGF-β1 in mice.” Sleep & breathing = Schlaf & Atmung vol. 25,2 (2021): 719-726. doi:10.1007/s11325-020-02166-2

4.Wu, Dan-Dan et al. “STING mediates SU5416/hypoxia-induced pulmonary arterial hypertension in rats by regulating macrophage NLRP3 inflammasome activation.” Immunobiology vol. 228,2 (2023): 152345. doi:10.1016/j.imbio.2023.152345

5.Gu, Hong et al. “Orexin-A Reverse Bone Mass Loss Induced by Chronic Intermittent Hypoxia Through OX1R-Nrf2/HIF-1α Pathway.” Drug design, development and therapy vol. 16 2145-2160. 5 Jul. 2022, doi:10.2147/DDDT.S363286

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